با همکاری مشترک دانشگاه پیام نور و انجمن فیزیولوژی و فارماکولوژی ایران

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر

2 استادیار، گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر

3 استادیار، گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر

چکیده

چکیده
144 عدد ماهی جوان صبیتی (Sparidentex hasta) پس از یک هفته آداپتاسیون با شرایط آزمایشگاه و شوری دریا، در شوری‎های 5، 20، 40 و 60 گرم در لیتر قرار داده شد. نمونه‎برداری از ماهیان در6 مرحله در ساعت 6، ساعت 12، روز 1، روز 2، روز 7 و روز 14 از آغاز تغییر شوری محیطی انجام شد. نتایج نشان داد سطوح کورتیزول پلاسما در زمان 12 ساعت در شوری­های 5 و 60 گرم درلیتر افزایش معنی­داری را نسبت به نمونه­های کنترل و شوری 20 گرم­ در لیتر داشت، اما بعد از آن در زمان 24 ساعت تا پایان دوره نمونه­برداری بین شوری­های مختلف اختلافی مشاهده نشد. میزان گلوکز نیز در تیمارهای 60 و 5 گرم در لیتر، پس از 12ساعت مواجهه، افزایش معنی­داری نسبت به ساعات 6 و 24 نمونه­برداری نشان داد، اما در طول دوره آزمایش در سایر شوری­ها اختلاف معنی­داری مشاهده نشد. غلظت پلاسمایی کلسیم خون در ماهی صبیتی در شوری­های مختلف محیطی در طی دوره آزمایش اختلاف معنی­داری را نشان نداد. در بررسی غلظت منیزیم پلاسما، 24ساعت پس از تغییر شوری، کاهش معنی‎داری در نمونه­های مربوط به شوری‏های 20 و 5 گرم در لیتر در مقایسه با نمونه­های کنترل مشاهده شد. نتایج نشان داد، هم در سازش با شوری5 و هم برای سازش با شوری 60 گرم در لیتر، افزایش کورتیزول نقش مهمی در ابتدای مواجهه با شوری‎های جدید داشته است، به گونه­ای که میزان آن طی 12 ساعت نسبت به نمونه­های کنترل افزایش معنی‎داری داشته است، اما پس از آن و به تدریج با ایجاد سایر تغییرات در بافت­ها و سلول­های مؤثر در تنظیم اسمزی، مقادیر کورتیزول به سطوح پایه بازگشت.
 

کلیدواژه‌ها

Barton, BA.; (2002) Stress in fishes: A diversity of responses with particular reference to changes in circulating corticosteroids. Integ Comp Biol, 42: 517-525.
Beyenbach, KW.; (1995) Secretory electrolyte transport in renal proximal tubules of fish. In: Wood CM, Shuttlewoth TJ (editors) Fish physiology, ionoregulation: cellular and molecular approaches. 3rd Ed, New York: Academic Press, 85-106.
Bijvelds, MJC.; Kolar, Z.; Wenderlaar Bonga, SE.; (1997) Mineral balance in Oreochromis mossambicus: Dependence on magnesium in diet and water. Fish Physiol Biochem, 16: 323-331.
Evans, DH.; Piermarini, PM.; Potts, WTW.; (1999) Ionic transport in the fish gill epithelium. Exp Zool; 283: 641-652.
Franklin, CE.; Forster, ME.; Davison, W.; (1992) Plasma cortisol and osmoregulatory changes in sockeye salmon Transferred to seawater: comparison between successful and unsuccessful adaptation. J Fish Biol, 41: 113-122.
Giari, L.; Manera, M.; Simoni, E.; Dezfuli, BS.; (2006) Changes to chloride and rodletcellsin gills, kidney and intestine of Dicen (trarchus labrax) exposed to reduced salinities. J Fish Biol, 69: 590-600.
Hickman, CP.; Trump, BF.; (1969) The Kidney. In: Hoar WS, Randall DJ (editors). Fish Physiology. New York: Academic Press, 91-239.
Kelly, SP.; Chow, INK.; Woo, NYS.; (1999) Haloplasticity of black seabream (Mylio macrocephalus) hypersaline to freshwater acclimation. Exp Zoo1, 283: 226-241.
Laiz-Carrion, R.; MartinDelRio, MP.; Miguez, JM.; Mancera, JM.; Soengas, JL.; (2003) Influence of cortisol on osmoregulation and energy metabolism in gilthead seabream (Sparus aurata). J Exp Zool, 298: 105-118.
Mancera, JM.; Perez-Figares, JM.; Fernandez-Llebrez, P.; (1993) Osmoregulatory respons estoabrupt salinity Changes in three uryhaline gilthead seabream (Sparus aurata). Comp Biochem Physiol, 106: 245-250.
McCormick, SD.; (2001)Endocrine control of osmoregulation in teleost fish. Am Zool, 41: 781-794.
Moron, SE.; Oba, ET.; Andrade, CA.; Fernandes, MN.; (2003) Chloride cell responses to ion challenge in two tropical freshwater fish, the erythrinids Hoplias malabaricus and Hoplerythrinus unitaeniatus. Exp Zool, 298: 93-104.
Movahedinia, AA.; Savari, A.; Morovvati, H.; Koochanin, P.; Marammazi, JG.;  Nafisi, M.; (2009) The Effects of Changes in Salinity on Gill Mitochondria-Rich Cells of Juvenile Yellowfin Seabream, Acanthopagrus latus. J Biol Sci, 9: 710-720.
Munro, J.; Audet, C.; Besner, M.; Dutil, JD.; (1994) Physiological Response of American plaice (Hippoglossoides platessoides) Exposed to low salinity. Can J Fish Aquat Sci, 51: 2448-2456.
Renfro, JL.; (1995) Solute transport by flounder renal cells in primary culture. In: Wood, CM and Shuttlewoth, T.J. (Eds.), Fish physiology, ionoregulation: cellular and molecular approaches. (2nd Ed.), New York, Academic Press. PP: 147-173.
Rodriguez, A.; Gallardo, MA.; Gisbert, E.; Santilari S, Ibarz A, Sanchez J, Castello-Sampaio LA, Bianchini A (2002) Salinity effects on osmoregulation and growth of the euryhaline flounder (Paralichthys orbignyanus). J Exp Mar Biol Ecol, 269: 187-196.
Salati, AP.; Baghbanzadeh, A.; Soltani, M.; Peyghan, R.; Riazi, GH.; (2010) The response of plasma glucose, lactate, protein and hematologic parameters to osmotic challenge in common carp (Cyprinus carpio). Ital J Zool, 4: 49-52
Schreck, CB.; (1990) Physiological, behavioral and performance indicators of stress. In: Adams SM (editor) Biological indicators of stress in fish. American Fisheries Symposium, Maryland, 29-37.
Woo, NYS.; Chung, KC.; (1995) Tolerance of Pomacanthus imperator to hypoosmotic salinities: changes in Body composition and hepatic enzyme activity. J Fish Biol, 47: 70-80.